Examen des selles, échantillonnage, techniques, exemples

3889
Philip Kelley

le examen des selles est une étude de laboratoire dans laquelle les matières fécales (matières fécales) sont examinées afin de détecter les parasites intestinaux. C'est l'une des techniques de laboratoire les plus simples et les plus anciennes, initialement développée par Anton Van Leeuwenhoek au 18ème siècle..

Anton Van Leeuwenhoek, considéré comme le père de la microbiologie, a utilisé la méthode coproparasitique-toscopique «directe» pour observer ses propres excréments et a décrit les années plus tard identifiées comme les trophozoïtes de Giardia lamblia, un protozoaire qui envahit l'intestin grêle de l'homme.

Forme adulte Ascaris lumbricoides (Source: Wikimedia Commons)

Les maladies parasitaires affectent des millions de personnes dans le monde, en particulier dans les pays pauvres ou sous-développés, où les conditions sanitaires sont médiocres liées à l'élimination des excréments et à la consommation d'eau contaminée..

Le diagnostic de ces maladies est important pour un traitement adéquat, l'examen coproparasitoscopique en étant un outil indispensable. C'est un test de laboratoire simple, rapide et peu coûteux.

L'examen des selles comprend plusieurs techniques qui, en plus de permettre la visualisation et la quantification directes des œufs, des trophozoïtes, des kystes ou des larves, permettent d'identifier les structures du microorganisme et ainsi d'identifier le parasite..

Les techniques utilisées pour l'examen des selles comprennent les techniques de coloration au bleu de méthylène, les méthodes de concentration, la technique Faust, Richie, les techniques de sédimentation et les examens directs, uniques ou en série..

Œuf non fécondé d'Ascaris lumbricoides. (Source: Centers for Disease Control and Prevention [domaine public], via Wikimedia Commons).

Index des articles

  • 1 Prélèvement d'échantillons
  • 2 techniques
    • 2.1 Examens directs
    • 2.2 Techniques de suspension et de concentration
  • 3 exemples
  • 4 Références

Prise d'échantillon

Pour mener à bien cette étude, la patiente doit prélever un échantillon de selles fraîches qui n'est pas contaminé par l'urine, l'eau, le sang (menstruel) ou le sol. L'échantillon doit avoir la taille d'une noix ou, s'il est liquide, il doit avoir au moins le volume correspondant à deux cuillères à soupe.

Le patient ne doit pas avoir pris de médicaments antiparasitaires pendant au moins trois jours avant le prélèvement ou pendant la période indiquée par son médecin. Vous ne devez pas non plus utiliser de médicaments laxatifs.

Les échantillons doivent être placés dans un contenant sec, à large ouverture, à couvercle ou dans un contenant jetable spécialement conçu (disponible dans votre pharmacie préférée). Les échantillons doivent être placés dans un environnement frais, ne doivent pas être réfrigérés plus de 24 heures et ne doivent pas être stockés à proximité de sources de chaleur ou congelés..

Lorsque l'examen indiqué est en série, au moins trois échantillons sont nécessaires, qui doivent être prélevés toutes les 24 heures ou plus, comme indiqué par le médecin. Pour ces cas, les laboratoires fournissent généralement un ensemble de flacons contenant des solutions avec des conservateurs..

Lorsque le patient observe un "ver" dans les selles, si possible, il doit le placer dans un flacon fermé avec de l'eau et l'emmener au laboratoire avec le flacon de l'échantillon de selles..

Les flacons avec les échantillons ou avec les «vers» doivent être étiquetés et identifiés avec le nom du patient, son âge, son sexe et la date et l'heure du prélèvement de l'échantillon..

Il est très important d'instruire adéquatement le patient sur tous ces aspects du prélèvement et de la manipulation des échantillons, car cela dépend de la viabilité des éléments pouvant exister dans ledit échantillon pour l'observation, l'identification et le diagnostic..

Techniques

Il existe des tests de selles directs et des techniques de suspension et de concentration d'échantillons qui sont utilisées plusieurs fois pour éviter les faux négatifs et observer des échantillons beaucoup plus propres. Certaines techniques de coloration sont également utilisées pour identifier certains parasites..

Examens directs

L'examen direct des selles, par la technique de boucle d'oreille goutte, consiste à faire une dilution de l'échantillon de selles avec une solution physiologique (0,9% NaCl) et à placer une goutte de cette solution dans une concavité qui a une lame spéciale utilisée à cet effet.

Une fois la goutte placée sur la lame, elle est recouverte d'une lamelle et observée au microscope. Cette technique nous permet d'observer les œufs et les kystes, mais elle nous permet également d'observer tout élément mobile tel que les flagellés, les larves, les trophozoïtes, les ciliés, etc..

Techniques de suspension et de concentration

Les techniques de suspension utilisent une solution plus dense que les éléments à observer, de sorte que ceux-ci flottent à la surface du liquide et puissent être collectés, puisqu'ils restent concentrés dans la couche superficielle de la solution..

Cette technique présente l'avantage de permettre d'avoir un échantillon de débris assez propre, puisque ceux-ci, étant plus denses, restent au fond de la bouteille. L'inconvénient relatif est que la solution rétrécit et déforme les microorganismes en peu de temps.

Ces méthodes ne sont pas utilisées pour les œufs d'helminthes et de cestodes car ils sont très lourds et ne flottent pas dans ces solutions. Ils sont largement utilisés pour observer les protozoaires sous leur forme tropozoïque ou leurs œufs et pour l'observation de larves telles que celles de Strongyloides stercoralis.

Une autre technique largement utilisée car elle ne déforme pas les microorganismes de l'échantillon et est simple et peu coûteuse est la technique de sédimentation au formol..

Parmi les techniques de concentration on peut citer comme exemple les techniques de Faust et Richie.

Les différentes techniques permettant la visualisation microscopique des œufs, larves ou autres éléments des différents parasites intestinaux, associées aux techniques de coloration, permettent l'identification et le diagnostic de ces maladies..

Exemples

Ensuite, un cas clinique est décrit et quelques images sont présentées qui illustrent l'utilité de l'examen des selles pour le diagnostic et l'évaluation des bénéfices du traitement..

Œuf de Trichuris trichuria (Source: CDC / Dr Mae Melvin, avec l'aimable autorisation: Public Health Image Library [Public domain] via Wikimedia Commons)

Un patient de sexe masculin de 18 ans se présente au cabinet du médecin pour des coliques, des douleurs abdominales, plus intenses dans la région périombilicale, des nausées et des épisodes de diarrhée aqueuse.

Lors de l'interrogatoire du patient, le médecin note deux points saillants: 1) le patient se réfère à s'être baigné dans un lac dans une zone rurale et 2) il est frappé par le fait que ses excréments flottent dans les toilettes. Après avoir examiné le patient, le médecin soupçonne la présence de Giardia lamblia.

Cycle de vie de Giardia lamblia (Source: LadyofHats [CC0] via Wikimedia Commons)

Ce protozoaire vit dans l'intestin grêle de l'homme et interfère avec l'absorption des graisses, ce qui génère des selles très grasses qui ont tendance à flotter. La pollution provient fréquemment de l'eau polluée dans les lacs ou les ruisseaux des zones rurales ou dans les piscines ou les spas avec un entretien médiocre.

Trophozoïtes de Giardia lamblia (Source: Photo d'Eva Nohýnková, Département de médecine tropicale, 1re Faculté de médecine, Université Charles de Prague et Hôpital Bulovka, République tchèque. Image sur papier par Marie Lipoldova, Laboratoire d'immunologie moléculaire et cellulaire, Institut de génétique moléculaire , Académie des sciences de la République tchèque, Prague, République tchèque [CC BY 4.0 (https://creativecommons.org/licenses/by/4.0)] via Wikimedia Commons)

Le médecin indique un examen des selles et les résultats confirment la présence de Giardia lamblia. Après la fin du traitement, un autre examen des selles est indiqué qui confirme l'absence de kystes ou de trophozoïtes de Giardia lamblia.

Les références

  1. Buonfrate, D., Mena, M. A., Angheben, A., Requena-Mendez, A., Muñoz, J., Gobbi, F.,… & COHEMI Project Study Group. (2015). Prévalence de la strongyloïdose en Amérique latine: une revue systématique de la littérature. Épidémiologie et infection, 143(3), 452-460.
  2. de Haro Arteaga, I., et Ruiz, A. E. C. (2014). Diagnostic de. Parasitologie médicale (4e, 347.
  3. Mendoza, D., Nunez, F. A., Escobedo, A. A., Pelayo, L., Fernandez, M., Torres, D., et Cordovi, R. A. (2003). Utilité de 2 méthodes coproparasitologiques et leur utilisation dans un essai thérapeutique antigiardiase. Journal cubain de médecine tropicale, 55(3), 174-178.
  4. Prix, -D. L. (2017). Manuel de procédure pour le diagnostic des parasites intestinaux. Presse CRC.
  5. Sahin, I., Kiliç, H., Ozca, M. et Orhan, R. (1984). Une étude copro-parasitologique sur les lutteurs de l'équipe nationale. Mikrobiyoloji bülteni, 18(2), 114-118.

Personne n'a encore commenté ce post.